WB 样本制备详细方法以及常见问题

WB(Western Blot)实验是一种检测特定蛋白质在样本中表达的实验方法。在进行WB实验时,要跑出完美的WB条带,制备样本要过关,因为它直接影响到实验结果的准确性和可重复性,以及条带的颜值。下面是关于WB实验样本制备的一些详细步骤:

1. **组织样本处理**:

   – 取适量组织样本,用预冷的PBS或生理盐水清洗干净,去除血液和杂质。

   – 使用剪刀和镊子将组织剪成小块,然后转移到匀浆器中。

   – 根据实验需求,可以加入适量的蛋白酶抑制剂和磷酸酶抑制剂,以防止蛋白质降解和修饰。

   -组织样品推荐的取样顺序:最先取消化系统相关的组织(如胃、大小肠、肝脏、胰腺等)和富含巨噬细胞的组织(如肺),然后取生殖相关的组织(如卵巢、子宫、睾丸等),最后取心、脾、肾、脑等器官。取下的组织如不马上使用,需冻存在液氮或-80 度冰箱里。

     -对于组织一般每100mg组织加入1-2ml抽提试剂。

2. **细胞样本处理**:

   – 对于贴壁细胞,先用PBS清洗两遍,然后加入适量的蛋白裂解液,通常需要加入蛋白酶抑制剂和磷酸酶抑制剂。

   – 对于悬浮细胞,直接离心收集细胞沉淀,然后用PBS重悬并再次离心,最后加入蛋白裂解液。

    -一般细胞6孔板每孔加入100-200μl抽提试剂。

 

3. **蛋白提取**:

   – 向样本中加入适量的蛋白裂解液,使其充分接触细胞或组织。

   – 使用匀浆器或超声破碎仪进行充分裂解,然后将样本转移到离心管中。

   – 在4℃下,以12000g离心15-20分钟,收集上清液即为所需的蛋白样本。

 

4. **蛋白定量**:

   – 使用BCA、Bradford或Lowry等方法对提取的蛋白进行定量,以确保每个样本中的蛋白浓度一致。

   – 根据实验设计,将样本稀释到相同的浓度,通常使用裂解液进行稀释。

 

5. **蛋白变性**:

   – 将样本与适量的5x或6x SDS-PAGE上样缓冲液混合,使最终浓度为1x。

   – 在95-100℃下煮沸5-10分钟,使蛋白质完全变性。

   – 冷却至室温后,即可用于SDS-PAGE电泳。

 

6. **注意事项**:

   – 在整个过程中,要保持低温操作,避免蛋白质降解。

   – 根据实验需求,选择合适的蛋白裂解液和蛋白酶抑制剂。

   – 确保样本充分裂解,以提高蛋白质的提取效率。

   – 在蛋白定量时,要确保标准曲线的准确性,以保证实验结果的可靠性。

 

     总之,WB实验样本制备涉及多个步骤,每个步骤都需要仔细操作,以确保实验结果的准确性和可重复性。

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